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	<title>银河星尘 &#187; 分析</title>
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		<title>Promoter region 定义 from Affymetrix</title>
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		<pubDate>Sat, 02 Feb 2008 17:13:15 +0000</pubDate>
		<dc:creator>Galaxy</dc:creator>
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		<description><![CDATA[http://www.affymetrix.com/products/arrays/specific/human_promoter.affx Probes are tiled at an average resolution of 35 bp, as measured from the central position of adjacent 25-mer oligos, leaving a gap of approximately 10 bp between probes. Each promoter region covers approximately 7.5 kb upstream through 2.45 kb downstream of 5&#8242; transcription start sites. For over 1,300 cancer-associated genes, coverage of promoter [...]]]></description>
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		<title>核酸和蛋白质序列分析</title>
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		<pubDate>Mon, 19 Nov 2007 05:34:19 +0000</pubDate>
		<dc:creator>Galaxy</dc:creator>
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		<description><![CDATA[核酸和蛋白质序列分析 关键词： 核酸序列 蛋白质序列 分析 软件 在获得一个基因序列后，需要对其进行生物信息学分析，从中尽量发掘信息，从而指导进一步的实验研究。通过染色体定位分析、内含子／外显子分析、ORF分析、表达谱分析等，能够阐明基因的基本信息。通过启动子预测、CpG岛分析和转录因子分析等，识别调控区的顺式作用元件，可以为基因的调控研究提供基础。通过蛋白质基本性质分析，疏水性分析，跨膜区预测，信号肽预测，亚细胞定位预测，抗原性位点预测，可以对基因编码蛋白的性质作出初步判断和预测。尤其通过疏水性分析和跨膜区预测可以预测基因是否为膜蛋白，这对确定实验研究方向有重要的参考意义。此外，通过相似性搜索、功能位点分析、结构分析、查询基因表达谱聚簇数据库、基因敲除数据库、基因组上下游邻居等，尽量挖掘网络数据库中的信息，可以对基因功能作出推论。上述技术路线可为其它类似分子的生物信息学分析提供借鉴。本路线图及推荐网址已建立超级链接，放在北京大学人类疾病基因研究中心网站（http://gene.bjmu.edu.cn/science/bioinfomatics.htm ）,可以直接点击进入检索网站。   下面介绍其中一些基本分析。值得注意的是，在对序列进行分析时，首先应当明确序列的性质,是mRNA序列还是基因组序列？是计算机拼接得到还是经过PCR扩增测序得到？是原核生物还是真核生物？这些决定了分析方法的选择和分析结果的解释。 （一）核酸序列分析 1、双序列比对（pairwise alignment）   双序列比对是指比较两条序列的相似性和寻找相似碱基及氨基酸的对应位置，它是用计算机进行序列分析的强大工具，分为全局比对和局部比对两类，各以Needleman-Wunsch算法和Smith-Waterman算法为代表。由于这些算法都是启发式（heuristic）的算法，因此并没有最优值。根据比对的需要，选用适当的比对工具，在比对时适当调整空格罚分（gap penalty）和空格延伸罚分（gap extension penalty），以获得更优的比对。   除了利用BLAST、FASTA等局部比对工具进行序列对数据库的搜索外，我们还推荐使用EMBOSS软件包中的Needle软件（http://bioinfo.pbi.nrc.ca:8090/EMBOSS/），和Pairwise BLAST （http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/）。以上介绍的这些双序列比对工具的使用都比较简单，一般输入所比较的序列即可。 （1）BLAST和FASTA   FASTA（http://www.ebi.ac.uk/fasta33/）和BLAST（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/）是目前运用较为广泛的相似性搜索工具。这两个工具都采用局部比对的方法，选择计分矩阵对序列计分，通过分值的大小和统计学显著性分析确定有意义的局部比对。使用FASTA和BLAST，进行数据库搜索，找到与查询序列有一定相似性的序列。一般认为,如果蛋白的序列一致性为25-30%,则可认为序列同源。BLAST根据搜索序列和数据库的不同类型分为5种（表2），另外PSI-BLAST通过迭代搜索，可以搜索到与查询序列相似性较低的序列。其中BLASTN、BLASTP在实践中最为常用，TBLASTN在搜索相似序列进行新基因预测时特别有用。   使用BLAST时，先选择需要使用的BLAST程序，然后提供相应的查询序列，选择所比对的数据库即可。 (2)Needle和Pairwise BLAST：其中Needle适用于蛋白质和DNA序列，而Pairwise BLAST仅适用于DNA序列 （3）相似性和同源性：必须指出，相似性（similarity）和同源性( homology)是两个完全不同的概念。同源序列是指从某一共同祖先经过趋异进化而形成的不同序列。相似性是指序列比对过程中检测序列和目标序列之间相同碱基或氨基酸残基序列所占比例的大小。经过比对，当相似性高于一定程度，可以推测序列可能是同源序列，具有一定同源性。 2、多序列比对和进化树   在研究生物问题时，常常需要同时对两个以上的序列进行比对，这就是多序列比对。多序列比对可用于研究一组相关基因或蛋白，推断基因的进化关系，还可用于发现一组功能或结构相关基因之间的共有模式（pattern）。最常用的多序列比对工具为ClustalW（http://www.ebi.ac.uk/clustalw/），多用于比较蛋白序列。 ClustalW用法： （1）输入：序列以FastA格式输入。 （2）输出：除了以文本形式外，还可以通过JalView显示和编辑结果。此外，还可以另外使用GeneDoc（常见于文献）及DNAStar软件等显示结果。多序列比对的结果还用于进一步绘制进化树。 3、ORF(Open Reading Frame)分析   从核酸序列翻译得到蛋白质序列，需要进行ORF分析，每个生物信息学分析软件包几乎都带有翻译功能。推荐使用NCBI的ORF Finder（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html）软件或EMBOSS中的getorf（http://bioinfo.pbi.nrc.ca:8090/EMBOSS/）软件。ORF Finder 以图形方式，分为正链+1、＋2、＋3和反链＋1、＋2、＋3六个相位预测ORF；Getorf可指定预测ORF的长度下限和指定预测正反链。进行ORF分析虽然比较简单，但应注意以下几点： （1）序列的准确性：尤其是通过计算机拼接的序列，需要根据EST和基因组序列进行反复校正。 （2）ORF是否完整：看在ORF上游同一相位是否具有终止码，或者具有起始密码子。 （3）参考Kozak一致性规律，即起始密码子位点符合A/GCCATGG。 （4）不要忽略反义读框。 4、染色体定位   根据基因组图谱对序列进行染色体定位和浏览其基因组上下游基因。具体方法为：（1）进行Genomic BLAST搜索。（2）通过“Genome view”观察基因组结构。（3）点击相应染色体区域，通过表意图（ideogram）和相应区域上下游的基因进行精确定位。 [...]]]></description>
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